Suministros
- tubos BAL (Bivona – 3 metros de Longitud, 11 mm de diámetro exterior, 800-258-5361)
- viales de muestreo: un cultivo, una citología (contiene EDTA para centrifugación y preparación de frotis secados al aire)
- jeringa de 10 cc para blow up cuff
- bolsa de 250 ml 0.,Solución salina al 9%
- llave de paso de 3 vías
- jeringas de 60 ml (3)
- 1 taza de muestras
- aguja de calibre 18
- lubricante estéril
procedimiento
Este no es un procedimiento estéril y se realiza mejor con al menos 2, pero preferiblemente 3 personas.
- Lay supplies out within easy reach
- Check cuff on BAL tube
- llenar (3) jeringas de 60 cc con solución salina
- sujetar físicamente la cabeza de la vaca con el cuello completamente extendido para facilitar el paso del tubo BAL hacia la tráquea., (Preferimos usar xilazina @ 10-20 mg para un Holstein IV adulto antes de este procedimiento.
- limpie la fosa nasal a través de la cual se introducirá el tubo BAL. El extremo esposado del tubo BAL se pasa a través del meato nasal ventral hacia la tráquea. La vaca toserá para indicar la colocación adecuada, pero sacudiendo la tráquea para sentir un «sonajero» valida la posición dentro del lumen traqueal.
- pase el tubo BAL hasta que haya resistencia.
- infle el manguito del tubo y tire suavemente del tubo para asegurarse de que haya un buen sello.,
- inyectar 60 ml de solución salina y luego aspirar con la misma jeringa.
- desconecte la jeringa o utilice una llave de paso para expulsar el aire de la jeringa.
- repetir la aspiración de 2 a 3 veces hasta que no se recupere más líquido.
- repita este procedimiento con cada una de las jeringas de solución salina de 60 cc (un total de 3 veces).
- para cada jeringa de 60 ml, puede obtener 30-50 cc espumoso (surfactante), líquido ligeramente turbio.
- desinfle el manguito BAL y retire el tubo.,
- vacíe las jeringas en el recipiente para muestras, guardando una pequeña alícuota de la jeringa final para el cultivo.
- mezcle el líquido de la Copa del espécimen y envíe una alícuota para el análisis del líquido.
- encuentre un laboratorio con experiencia leyendo citología de fluidos BAL para determinar su Conteo diferencial.
- averigüe en el AHDC el vol preferido. de fluido, contenedor de transporte y conservante para el mejor análisis.
- Los tubos BAL se pueden reutilizar., Limpie el exterior y el lumen del catéter con solución diluida de clorhexidina, enjuague con agua, expulse cualquier líquido del lumen y deje secar en espiral o colgado sobre un gancho en un área limpia y libre de polvo de la clínica.
indicaciones e interpretaciones
El lavado broncoalveolar (BAL) es una técnica segura, sencilla y económica que se puede realizar en el campo sin equipos sofisticados ni habilidades avanzadas. BAL proporciona una excelente muestra de líquido de revestimiento epitelial para la caracterización de enfermedades pulmonares difusas e inflamación de las vías respiratorias., La inflamación de las vías respiratorias inferiores del ganado puede reflejar irritación, alergia y/o infección difusa típica de la mala calidad del aire en un ambiente con ventilación inadecuada, limpieza subóptima, hacinamiento y / o grupos de edad mezclados de ganado. En otras especies, la citología del líquido BAL tiene mejor correlación con la histopatología pulmonar que el líquido traqueal. Pero este último líquido es la muestra preferida para determinar la causa bacteriana de bronconeumonía en un rebaño de ganado.,
en una muestra de LBA citocentrífuga, con frotis examinados a alta potencia, creemos que un diferencial celular normal es similar al de los caballos: 40-60% de macrófagos, 30-60% de linfocitos, menos del 5% de neutrófilos, menos del 2% de mastocitos y menos del 0,5% de eosinófilos.