materiali di consumo
- BAL Tubi (Bivona – 3 metri di lunghezza, 11 mm di diametro esterno, 800-258-5361)
- Campionamento fiale: una cultura, una citologia (contiene EDTA per la centrifugazione e la preparazione di aria secca strisci)
- 10 cc siringa per blow up bracciale
- 250 ml sacca 0.,soluzione salina al 9%
- rubinetto a 3 vie
- siringhe da 60 ml (3)
- 1 tazza di campioni
- ago calibro 18
- Lubrificante sterile
Procedura
Questa non è una procedura sterile ed è meglio eseguita con almeno 2, ma preferibilmente 3 persone.
- Disporre le scorte a portata di mano
- Controllare il bracciale sul tubo BAL
- Riempire (3) siringhe da 60 cc con soluzione salina
- Trattenere fisicamente la testa della mucca con il collo completamente esteso per facilitare il passaggio del tubo BAL nella trachea., (Preferiamo usare xylazine @ 10-20 mg per un Holstein IV adulto prima di questa procedura.
- Pulire la narice attraverso la quale verrà introdotto il tubo BAL. L’estremità ammanettata del tubo BAL viene fatta passare attraverso il meato nasale ventrale nella trachea. La mucca tossirà per indicare il corretto posizionamento, ma scuotendo la trachea per sentire un “sonaglio” convalida la posizione all’interno del lume tracheale.
- Passare il tubo BAL fino a quando non vi è resistenza.
- Gonfiare il bracciale del tubo e tirare delicatamente il tubo per garantire che ci sia una buona tenuta.,
- Iniettare 60 ml di soluzione salina e quindi aspirare con la stessa siringa.
- Scollegare la siringa o utilizzare una valvola a rubinetto per espellere l’aria dalla siringa.
- Ripetere l’aspirazione da 2 a 3 volte fino a quando non viene recuperato più fluido.
- Ripetere questa procedura con ciascuna delle siringhe da 60 cc di soluzione salina (per un totale di 3 volte).
- Per ogni siringa da 60 ml, si possono ottenere 30-50 cc di liquido schiumoso (tensioattivo), leggermente torbido.
- Sgonfiare il bracciale BAL e rimuovere il tubo.,
- Svuotare le siringhe nella tazza del campione, salvando una piccola aliquota dalla siringa finale per la coltura.
- Mescolare il fluido della tazza del campione e presentare un’aliquota per l’analisi del fluido.
- Trova un laboratorio con esperienza nella lettura della citologia del fluido BAL per determinare il conteggio differenziale.
- Scopri dall’AHDC il vol preferito. di fluido, contenitore di trasporto e conservante per la migliore analisi.
- I tubi BAL possono essere riutilizzati., Pulire l’esterno e il lume del catetere con una soluzione diluita di clorexidina, risciacquare con acqua, espellere qualsiasi fluido dal lume e lasciare asciugare arrotolato o appeso a un gancio in un’area pulita e priva di polvere della clinica.
Indicazioni e interpretazioni
Il lavaggio broncoalveolare (BAL) è una tecnica sicura, semplice ed economica che può essere eseguita sul campo senza attrezzature sofisticate o abilità avanzate. BAL fornisce un eccellente campione di fluido di rivestimento epiteliale per la caratterizzazione di malattie polmonari diffuse e infiammazione delle vie aeree., L’infiammazione delle vie aeree inferiori dei bovini può riflettere irritazione, allergia e/o infezione diffusa tipica della scarsa qualità dell’aria in un ambiente con ventilazione inadeguata, pulizia sub ottimale, sovraffollamento e/o gruppi di età misti di bovini. In altre specie, la citologia del fluido BAL ha una migliore correlazione con l’istopatologia polmonare rispetto al liquido tracheale. Ma quest’ultimo fluido è il campione preferito per determinare la causa batterica della broncopolmonite in una mandria di bovini.,
In un campione di BAL citocentrifugato, con strisci esaminati ad alta potenza, riteniamo che un differenziale cellulare normale sia simile a quello dei cavalli: 40-60% macrofagi, 30-60% linfociti, meno del 5% neutrofili, meno del 2% mastociti e meno dello 0,5% eosinofili.