Fournitures
- Tubes BAL (Bivona – 3 mètres de longueur, 11 mm de diamètre extérieur, 800-258-5361)
- flacons D’échantillonnage: une culture, une cytologie (contient de L’EDTA pour la centrifugation et la préparation de frottis séchés à l’air)
- 10 cc seringue pour faire sauter le brassard
- Sac de 250 ml 0.,Solution saline à 9%
- robinet à 3 voies
- seringues de 60 ml (3)
- 1 tasse à échantillon
- aiguille de calibre 18
- lubrifiant stérile
procédure
il ne s’agit pas d’une procédure stérile et il est préférable de la réaliser avec au moins 2, mais de préférence 3 personnes.
- disposer les fournitures à portée de main
- Vérifier le brassard sur le tube de BAL
- remplir (3) seringues de 60 cc de solution saline
- retenir physiquement la tête de la vache avec le cou complètement étendu pour faciliter le passage du tube de BAL dans la trachée., (Nous préférons utiliser xylazine @ 10-20 mg pour un Holstein IV adulte avant cette procédure.
- nettoyez la narine à travers laquelle le tube BAL sera introduit. L’extrémité menottée du tube BAL est passée à travers le méat nasal ventral dans la trachée. La vache tousse pour indiquer un placement approprié, mais secouer la trachée pour sentir un « hochet » valide la position dans la lumière trachéale.
- passer le tube BAL jusqu’à ce qu’il y ait une résistance.
- Gonfler le brassard du tube et tirez doucement sur le tube pour assurer une bonne étanchéité.,
- injecter 60 ml de solution saline, puis aspirer à l’aide de la même seringue.
- débranchez la seringue ou utilisez un robinet d’arrêt pour expulser l’air de la seringue.
- répétez l’aspiration 2 à 3 fois jusqu’à ce qu’aucun autre liquide ne soit récupéré.
- répétez cette procédure avec chacune des seringues de 60 cc de solution saline (total de 3 fois).
- pour chaque seringue de 60 ml, vous pouvez obtenir 30-50 cc mousseux (tensioactif), un liquide légèrement trouble.
- dégonfler le brassard BAL et retirer le tube.,
- Videz les seringues dans la Coupe de l’échantillon, en gardant une petite aliquote de la seringue finale pour la culture.
- mélanger le fluide de la coupelle d’échantillon et soumettre une aliquote pour l’analyse du fluide.
- trouvez un laboratoire ayant de l’expérience dans la lecture de la cytologie des fluides BAL pour déterminer votre comptage différentiel.
- découvrez à partir de L’AHDC le vol préféré. de fluide, conteneur de transport, et conservateur pour la meilleure analyse.
- Les tubes BAL peuvent être réutilisés., Nettoyez l’extérieur et la lumière du cathéter avec une solution diluée de Chlorhexidine, rincez à l’eau, expulsez tout liquide de la lumière et laissez sécher enroulé ou suspendu au‐dessus d’un crochet dans une zone propre et sans poussière de la clinique.
Indications et interprétations
Le lavage Bronchoalvéolaire (BAL) est une technique sûre, simple et peu coûteuse qui peut être réalisée sur le terrain sans équipement sophistiqué ni compétence avancée. BAL fournit un excellent échantillon de liquide de revêtement épithélial pour la caractérisation des maladies pulmonaires diffuses et de l’inflammation des voies respiratoires., L’inflammation des voies respiratoires inférieures chez les bovins peut refléter une irritation, une allergie et/ou une infection diffuse typiques d’une mauvaise qualité de l’air dans un environnement où la ventilation est inadéquate, la propreté sous-optimale, l’encombrement excessif et/ou les groupes d’âge mélangés des bovins. Chez d’autres espèces, la cytologie du fluide BAL a une meilleure corrélation avec l’histopathologie pulmonaire que le liquide trachéal. Mais ce dernier liquide est l’échantillon préféré pour déterminer la cause bactérienne de la bronchopneumonie dans un troupeau de bovins.,
Dans un échantillon de bal cytocentrifugé, avec frottis examinés à haute puissance, nous pensons qu’un différentiel cellulaire normal est similaire à celui des chevaux: 40-60% de macrophages, 30 ‐ 60% de lymphocytes, moins de 5% de neutrophiles, moins de 2% de mastocytes et moins de 0,5% d’éosinophiles.