but et portée:
Les organismes contenant des cytochromes produisent une enzyme oxydase intracellulaire. Cette enzyme oxydase catalyse l’oxydation du cytochrome C. Les organismes qui contiennent du cytochrome c dans le cadre de leur chaîne respiratoire sont oxydases positives et transforment le réactif en bleu/violet. Les organismes dépourvus de cytochrome c dans le cadre de leur chaîne respiratoire n’oxydent pas le réactif, le laissant incolore dans les limites du test, et sont oxydases négatives.,
Les bandelettes Oxistrips™ oxydase sont des bandelettes de test prêtes à l’emploi avec une poignée en plastique pratique afin que l’utilisateur puisse éviter tout contact cutané avec la zone de réaction.
réactifs et Fournitures:
- Kit de test Hardy Oxistrips
- H2O stérile
- boucle ou bâton D’inoculation stérile
stockage des réactifs
- à la réception stocker à 15-30 degrés C.
- Les produits ne doivent pas être utilisés s’il y a des signes de détérioration ou si la date de péremption est dépassée.
- conservez OxiStrips™ et OxiSticks™ avec un déshydratant dans le flacon en tout temps.,
- la date de péremption s’applique au produit dans son emballage intact lorsqu’il est stocké comme indiqué.
le Contrôle de la Qualité:
QC est effectué sur chaque jour, le test est effectué. Utiliser la procédure avec la culture de P aeruginosa ATCC 27853 (oxydase positive) et E. coli (ATCC 25922) (oxydase négative).
enregistrer les résultats de QC sur le journal de QC du test D’oxydase.
procédure
- placer la bandelette de test d’oxydase dans une boîte de Pétri et humidifier une zone de la bandelette à tester avec de l’eau. Ne pas saturer la bande.,
- avec une boucle d’inoculation stérile ou un bâton d’applicateur en bois, étaler une pâte bactérienne de 3-4 colonies bien isolées sur la zone humidifiée. Utilisez des colonies âgées de 18 à 24 heures.
- L’apparition d’une couleur bleu/violet dans les 30 secondes indique un test positif.
- Important: Toute couleur apparaissant après ce délai doit être ignorée.
Limites
le test d’oxydase peut être utilisé pour l’identification présumée de Neisseria spp. et dans la différenciation et l’identification des bacilles gram-négatifs., Tous les organismes à oxydase positive doivent être examinés par coloration de gram pour déterminer la morphologie cellulaire et la réaction de gram. Des tests biochimiques supplémentaires, utilisant la culture pure, sont recommandés pour une identification complète.
L’utilisation de nichrome ou d’autres dispositifs d’inoculation contenant du fer peut provoquer des réactions faussement positives.
Les réactions Oxydasiques des bacilles à gram négatif doivent être déterminées sur des colonies obtenues à partir de milieux non sélectifs et non différentiels pour garantir des résultats valides.
La Plupart Des Haemophilus spp. sont oxydase-positifs., Des bandelettes réactives ou des réactifs d’oxydase moins sensibles peuvent donner des résultats faussement négatifs.
Les organismes faiblement oxydasiques, tels que Pasteurella multocida, peuvent mettre plus de temps à montrer une réaction positive sur les bandelettes réactives.
Il est recommandé d’utiliser des colonies âgées de 18 à 24 heures. Les colonies plus âgées peuvent produire des réactions plus faibles.
le test d’oxydase doit être effectué sur des isolats à 15-30 degrés C ou plus.
tout développement de couleur apparaissant après 30 secondes d’inoculation doit être ignoré.