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2005年の嚢胞性線維症財団からの報告によると、黄色ブドウ球菌は嚢胞性線維症(CF)患者の気道から非常に頻繁に回収され（平均して患者の52%以上）、CF(1,3)に罹患している乳児および小児から回収された最初の病原体の一つである。, この生物を適時に検出および同定し、正確な感受性パターンを生成するために使用される方法は、CF患者のクリティカルケアおよびアウトカムにとって重要である。

CF患者の呼吸培養を行う研究室は、病原体を排除または排除し、これらの病原体に対する適切な感受性データを提供するのに必要な時間を十分に S.aureusはこの患者集団の検出のために重大であると考慮される複数の病原体の中の一つだけです;他は緑膿菌、Burkholderiaおよび関連sppを含んでいます。, これらの製品は、インフルエンザ菌および肺炎球菌、ならびにマイコバクテリアおよびウイルスを含む。 CF患者から収集された標本に対して行われる培養は労働集約的であり、多くの培地タイプの使用を伴うため、選択培地がしばしば利用される。 これらの媒体は正常な植物相の成長を最小にし、潜在的な病原体がこれらの呼吸の標本の複雑な微生物叢からより容易に回復されるようにする。, これらの選択的培地の一つは、マンニトール塩寒天（MSA）であり、これは選択的かつ差別的にs.aureusの分離株を回復するために使用される（この寒天に黄色 しかしながら、非選択的/非差分的媒体は、現在、黄色ブドウ球菌の同定方法を実行し、Vitek-2機器の感受性試験に使用するための懸濁液を調製する際の使用に推奨されている。 Ｓの同定および感受性試験に関連する時間および費用を減少させるために, cf患者からの呼吸培養からの黄色ブドウ球菌、この研究は、MSAが決定的な同定のためだけでなく、Vitek-2システムにおける感受性試験のための懸濁液を調製するために使用することができるかどうかを決定するために行われた。

（この作品の一部は以前に出版されました。）

黄色ブドウ球菌の百分離株、そのうち69はオキサシリン耐性黄色ブドウ球菌であり、そのうち31はオキサシリン感受性Sであった。, 2005年にCF患者から回収された黄色ブドウ球菌は、血液寒天（BA）とMSAプレートの両方に継代培養され、GPS-61カードを用いてVitek-2機器で感受性をテストされた。 感受性パターンは、任意の不一致の結果のために比較されました。, 定期的な実験室の議定書ごとに、これらの有機体はまた次の抗生物質への感受性のための100mm Mueller-Hintonの寒天の版のディスク拡散によってテストされた:cefoxitin(oxacillinの抵抗の確認として)、trimethoprim sulfamethoxazole(GPS-61カードの抗菌剤の電池に含まれていないので)、clindamycinおよびerythromycin(誘導可能なclindamycinの抵抗の決定のための)、およびvancomycin(可能なバンコマイシンの抵抗の徴候としてディスクの端まで成長のフィルムのための点検として）である。,

さらに、2005年に提出された標本を有するすべてのCF患者に対する最新の呼吸培養レポートがレビューされた。 このレビューは、MSAプレート上で検出された黄色のコロニーが決定的にs.aureusとして同定された頻度を決定するために行われました。

CF患者から回収された69オキサシリン耐性および31オキサシリン感受性黄色ブドウ球菌の分離株の九〇から七パーセントは、彼らがMSAまたはBA培地, ＭＳＡまたはＢＡプレートと得られた感受性試験結果を比較したところ，三つの不一致のみが認められた。

二つの分離株はエリスロマイシンに関して矛盾した結果を示した。 ある症例では，ＢＡプレートから試験した分離物はＭＳＡプレートからの中間物を試験しながら耐性であったが，後者の症例では逆（ＢＡプレート上のエリスロマイシン中間体とＭＳＡプレート上のエリスロマイシン耐性）が見られた。, 本症例では，分離はＢＡプレートから試験したときにクリンダマイシンに耐性であり，ＭＳＡプレートから試験したときに中間体であった。 分離株はいずれもＤ試験陽性であり，ディスク拡散Ｄ試験に基づいてクリンダマイシンおよびエリスロマイシン耐性として報告されていたであろう。, アンピシリン-スルバクタム、クロラムフェニコール、ゲンタマイシン、キヌプリスチン-ダルフォプリスチン（シネルシド）、リファンピン、オキサシリン、セファゾリン、リネゾリド、およびバンコマイシンを含む他のすべての抗菌剤は、試験に使用された培地にかかわらず、GP-61Vitek-2カードで同じ結果を示した。

2005年に提出された標本を持つすべてのCF患者の最新の培養レポート（患者ごとの唯一のレポートは、今年の時間内に重複を排除するために見直された）は、MSAプレート上に見られる黄色のコロニーが実際に黄色ブドウ球菌の分離株であるかどうかを判断するために見直された。, >症例の98％において、>1+（1+はストリーキングの最初の象限でのみ成長と定義される）MSAプレート上で黄色のコロニーが見つかった場合、baプレート上に継代培養され、定期的な実験室法（必要に応じてスライドコアグラーゼ試験に続くチューブコアグラーゼ試験）によって最終的に黄色のコロニーが同定された。—–

MSAは、Sの単離のための選択的な差動媒体として長年にわたって使用されてきた。, 黄色ブドウ球菌と長いCF患者の呼吸器標本（で使用するための選択的培地の一つとして推奨されている4）。 最近、新しい選択的寒天、CHROMagarブドウ球菌の黄色ブドウ球菌は、また、黄色ブドウ球菌の分離株（選択的および差動使用のために有用であることが報告された2、4）。 Flayhart et al. (2)黄色ブドウ球菌の同定は、100％の特異性を持つ追加のテストなしでこの培地から報告することができ、CLSI（旧NCCLS）M35の95％の精度要件を超えることができることを報告した-生物の同定のための許容可能な単一の迅速なテストとして使用するための文書（2、5）。, Flayhartらの研究からのこの声明に関しては、Gilliganらによって執筆された最近のCumitech。 (4)は、”MSAでも同様の結果が得られる可能性が非常に高いが、その評価は最近行われていない”と述べている。”200以上の患者のレポートは、CF呼吸培養から黄色ブドウ球菌の検出のためのMSAのパフォーマンスを評価するために、本研究でレビューされ、レビューはMSAも正確にSを識別することができることを示しました。, 黄色ブドウ球菌(>98%)適切な発色反応が起こり、>培地上で単離された適切な黄色コロニーの1+レベルが存在する場合。 まれに、≥1+の量の黄色のコロニーは、コアグラーゼ陰性ブドウ球菌またはコリネバクテリウム種のいずれかとして同定された。 黄色のコロニーがmsa上で≥1+の量で栽培される場合、または生物の混合物が栽培される場合、これらの培養物中の黄色ブドウ球菌の存在を排除するために、日常的な分離および識別手順を進めるべきである。,

MSAプレートから直接取り出された分離株を用いたVitek-2機器における正確な感受性試験を行う能力も評価された。 分離株の97％について合意が達成され、三つの不一致の分離株のみが認められ、問題の分離株あたり一つの抗生物質のみが認められた。 これらの三つの生物は、エリスロマイシン（2分離株）またはクリンダマイシン（1分離株）感受性のいずれかの偏差を示し、オキサシリン耐性（69分離株）またはオキサシリン感受性（31分離株）の存在を決定するための不一致は認められなかった。 私たちのSのすべて以来。, ａｕｒｅｕｓ分離株はｄ試験により誘導性クリンダマイシン耐性の存在についても試験したが，分離株はｄ試験陽性であったため，クリンダマイシンとエリスロマイシンの両方に耐性であることが正しく報告された。 これは、Flayhartらによって行われたCHROMagarブドウ球菌の黄色ブドウ球菌の培地から直接コロニーを利用する評価からの正確な感受性の結果の報告と同様である(2)。

結論として、研究はSの分離株であるが、Sの分離株である。, 黄色ブドウ球菌は感受性のためにテストされる前にMSAおよびBAプレート上に継代培養されたが、標本を接種したMSAから直接適切に純粋な、単離され、およびインキュベートされたコロニーの感受性試験は、テスト前に非選択的培地での継代培養を必要とせずに同様の確実性で達成できることを合理的に要約することができる。 これらの知見を検証するには、臨床標本を利用した追加の前向き研究が必要です。, さらに、>1+の量でMSAプレート上に特徴的な黄色のコロニーを示す生物は、>98％の信頼で、さらなる同定テストなしで黄色ブドウ球菌として報告することができる。 これらの方法は、この患者集団に対する黄色ブドウ球菌の検出および感受性テストに必要な時間を減少させるだけでなく、CF標本から黄色ブドウ球菌の報告に現在使用されているいくつかの継代培養培地および同定試薬の除去を通じて実験室へのコストを減少させることができる。, さらに、ＣＦ呼吸培養物に関するＭＳＡを最大限の可能性に利用するにあたって、より新しい、より高価な選択培地の添加の必要はない。